2Cotick: на фото везде А. Габон. С разных ракурсов, 2 разных соцетия (в разное время на одном кусте), inflor_A_gabon00.jpg, inflor_A_gabon01.jpg, inflor_A_gabon02.jpg - от 04.08.2007 и inflor_A_gabon03.jpg - от 22.07.2007
================================
СТАТЬЯ
================================
Исследовалось влияние различных показателей на изоляты и культуру протопластов Anubias nana Engler. Такие показателей, как вид и концентрация ферментов, концентрация маннитола (рус. = маннит) в питательном растворе, время инкубации, возраст растительного материала и концентрация сахарозы в очищающем растворе оказались чрезвычайно важными для получения максимального числа и процента выхода протопластов. Наибольшая продуктивность ((4.79 +- 0.48)млн./г) и выход (82.90 +- 4.31 %) были получены при выделении протопластов из шестинедельных листьев, при использовании среды следующего состава [для освобождения клеток из клеточной стенки = собственно получения чистых протопластов]: 2% целюллазы Onozuka RS (фермент, растворяющий целюллозу в клеточной стенке) , 0.2% пектолиазы (?) /Pectolyase Y-23/ (вероятно, фермент, растворяющий пектин в клеточной стенке, хотя то была бы пектиназа), 0.6-молярный р-р маннита, 2.5 миллимолярный р-р хлорида кальция и 5 миллимолярный р-р морфолиноэтана (?) хлорид morpholinoethane (MES), при pH 5.6 при выдерживании в темноте в течение 4 ч и очищенные центрифугированием в 18% р-ре сахарозы. Очищенные протопласты развивались в среде KM8P, дополненной 0.2 мг. дихлорофеноксиацетатной (L 2,4-dichlorophenoxyacetic) кислотой (2,4-D), 1 мг L альфа-нафталенацетатной кислоты (NAA), 0.5 мг. L зеатина (оказывается, зеатин - основной природный цитокинин (его синтетический аналог – кинетин
http://www.dictionary.cbio.ru/termin.php?id=245 ) на агаре с тонким слоем жидкой культуры. Клеточная стенка у про-топластов восстанавливалась в течение 24 ч. Первое клеточное деление [начало формирования колонии - каллюса] наблюдалось на 7-9 день культивирования и в течение 30 дней формировались микроколонии. Культуральная среда (?), методика культивирования (?) и регуляторы роста оказались важными показателями, влияющими на деление клеток [каллюса] и выживания протопластов.
Полный текст доступен
http://www.ansijournals.com/ijb/2006/193-200.pdf , можно и посмотреть.
ВВЕДЕНИЕ
Водные растения являются важной экономической составляющей Таиланда. Много видов водных растений успешно ставится на коммерческую ногу повсеместно. Anubias - один из главных экспортируемых родов. Род Anubias включает восемь видов. Anubias nana Engler (Dwarf Anubias), коммерчески культивируется в аквариумах (Miihlberg, 1982). A. nana Engler – вид из класса Однодольных, принадлежащий сем. Araceae (Cook, 1996). Это - небольшое привлекательное растение с толстыми пол-зучим корневищем, черешком до 5 cm длины и гладкой (glabrous) листовой пластинкой до 10 cm длиной и около 2.08 cm шириной [Ха-ха-ха! Прим.пер.]. Растут медленно и листья сохраняются в течение нескольких лет. По традиции, размножается вегетативно делением корневища (Rataj, Horeman, 1977; Allgayer, Teton, 1986).
Изолированные протопласты - клетки растения, в которых клеточная стенка механически или ферментативно удалена (Eriksson, 1989). Протопласты имеют разнообразные приложения, включая исследование физиологии клетки и генетики, свойств плазматической мембраны, межклеточных связей и понимается частично (?). С точки зрения своего сельскохозяйственного применения технология важна в исследовании отношений паразит - хояин и генетических преобразований растения (Sinha et all., 2003). Протопласты - также полезный материалы для промышленного ofnovel (?) обновления генотипов цветочных и декоративных растений посредством соматической гибридизации (Nakano, Mii, 1993; Mizuhiro et all., 2001; Horita et all., 2003) и сома-клонической (
) изменчивости (Frearson et all., 1973). Соматическая гибридизация посредством слияния пропопластов допускает получение гибри-дов между неродственными видами, предоставляет шансы для генерации культиваров (не вид, не сорт, не форма
), которая не может быть получена стандартными методами гибридизации (Nakano et all., 1996).
Следовательно, разработка методов для культивирования и слияния протопластов Anubias могут провести к производству новых разновидностей [мало нам проблем было, будут и новые
]. Это должно увеличивать рынок вида Anubias в декоративной промышленности растения. Тем не менее, для успешного приложения этой техники доступность эффективной процедуры для выделения и культивирования протопластов является предварительным условием, но, пока, изоляция протопласт и культура этого вида не описана. В этом анализе, мы попытались устанавливать эффективную процедуру культивирования и выделения протопластов A. nana Engler.
Выделение, культивирование и деление протопластов Anublas nana Engler.
(A) - шестинедельные растения пригодны для изоляции протопластов из листа,
(B) протопласты после очистки в 18% р-ре сахарозы,
(C) живые протопласты светятся желто-зеленым цветом при окрашивании флюоресцеина диацетатом (FDA),
(D) культура протопластов на агаре; клеточная стенка регенерировалась в течение 24 ч с обнаруженным при освещении белым calcoiluor,
(E) первое деление клетки после 7-9 дней культивирования,
(F) небольшие колонии ячейки после культивирования в течение 30 дней. Шкала = 20 мкм
Обратите внимание на эти источники в списке литературы из данной статьи:
Pongchawee, K., 2004. Micropropagation of Anubias nana Engler. 42th Kasetsart Annual Conference. February 3-6, 2004. Kasetsart University, Bangkok, Thailand, pp: 1-8.
Pongchawee, K., U. Na-Nakorn, S. Lamseej an, S. Poompuang and S. Phansiri, 2005. Isolation and culture of aquatic plant Cryptocoryne wendtii De Wit protoplast, The 5th National Symposium on Graduate Research. October 10-11, 2005, The Graduate School, Kasetsart University, Bangkok, Thailand, pp: 25.
===============================================
2Авось: извиняйте за неосведомлённость - как раз в 2006 я оч редко бывал на форуме, вот и пропустил такое нетривиальное в аквариумном деле явление как семенное размножение анубиаса. Будем исправляться
Комбінований вигляд
